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新型冠状病毒肺炎(简称新冠肺炎,COVID-19),具有较强的人际传播能力,传播速度快[1-3]。COVID-19患者会出现与流感类似的症状,包括发烧、咳嗽、乏力、腹泻等,重症患者出现呼吸困难或低氧血症,可发展为急性呼吸窘迫综合征、脓毒症休克、多器官功能衰竭等导致死亡[4]。中医药早期干预可有效预防病情向重、危重方向恶化[5]。目前,中医药控制COVID-19的疗效普遍受到重视[6],业界提倡结合不同疾病阶段使用不同的处方[2]。寒湿郁肺汤为武汉火神山医院依据国家卫健委印发的《新型冠状病毒感染的肺炎诊疗方案》所引进的四种肺炎诊疗中药汤剂处方之一,用于新型冠状病毒初期治疗,该汤剂由苍术、陈皮、厚朴、藿香、草果、生麻黄、羌活、生姜共八味中药组方而成。
UHPLC-MS/MS因具有分离能力强,检测限低,高灵敏度,高选择性等特点,易于开发为临床检测项目的参考方法[7]。本研究应用UHPLC-MS/MS法,依照2015版中国药典对寒湿郁肺汤中11种主成分进行含量测定,为后续的质量研究奠定基础。
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Agilent1290超高效液相色谱仪(包括G4220A二元高压泵、G4226A自动进样器、G1330B控温箱、G1316C柱温箱)、Agilent G6460A型三重四极杆串联质谱仪、电喷雾离子源、Mass Hunter化学工作站B.06.00(美国Agilent公司);BSA124S-CW型天平、CPA225D型天平(德国Sartorius公司);Mini spin型离心机、移液枪(德国Eppendorf公司);Labnet VX-200型定时可调速涡旋混合器(美国Labnet公司);SK7200H型超声仪(上海科导超声仪器有限公司);UNIVERSAL32R型台式冷冻离心机(德国Hettich公司)。
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香草酸(批号:H11J9Z65318)、厚朴酚(批号:Y27J10C91584)、和厚朴酚(批号:T28O6B5149)、汉黄芩素(批号:T11J11R108209)、刺槐素(批号:C12O8Q45551)、6-姜酚(批号:P29O10F101611)、桔皮素(批号:H24F11K108893)、羌活醇(批号:R28M9F57295)、川陈皮素(批号:N10J10R90249)、紫花前胡苷(批号:W07A10Z94862)、利血平(批号:Y02M11Y17235)、橙皮苷(批号:P06D9F77001)均为对照品,纯度均≥97%,购于上海源叶生物科技有限公司;甲醇(批号:10951907818,质谱级)、乙腈(批号:JA075930,质谱级)购自德国默克公司;甲酸(批号:17033D,分析纯)、乙酸铵(批号:H1709024,色谱纯)购自阿拉丁试剂(上海)有限公司;水为屈臣氏蒸馏水(广州屈臣氏食品饮料有限公司),其余试剂均为分析纯。
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寒湿郁肺汤中苍术(批号:20092108)、陈皮(批号:20010181)、厚朴(批号:20061903)、藿香(批号:20031708)、草果(批号:19092902)、生麻黄(批号:20200301)、羌活(批号:20070709)等中药材均由上海长征医院药材科提供,生姜(批号:19062404)购于广西壮族自治区。
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分别取各对照品适量,精密称定,用甲醇配制成含1.01 mg/ml香草酸、0.99 mg/ml厚朴酚、1.03 mg/ml和厚朴酚、1.00 mg/ml汉黄芩素、1.00 mg/ml刺槐素、1.01 mg/ml 6-姜酚、1.02 mg/ml桔皮素、1.01 mg/ml羌活醇、1.03 mg/ml川陈皮素、1.00 mg/ml紫花前胡苷、1.00 mg/ml利血平(IS)和1.00 mg/ml橙皮苷的对照品溶液,于−20 ℃冰箱保存,备用。
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取寒湿郁肺汤中苍术15 g、陈皮10 g、厚朴10 g、藿香10 g、草果6 g、生麻黄6 g、羌活10 g、生姜10 g,精密称定,置锅中,加水500 ml,浸泡30 min,加热至煮沸后调至文火煎20 min,取药液;第二次加水300 ml,加热至煮沸后调至文火煎20 min,取药液,与第一次药液混匀,取出,放冷。精密量取药液1 ml,加入1 μg/ml的利血平10 μl,涡旋3 min,14 500 r/min离心10 min,取上清液,经0.22 μm微孔滤膜过滤,续滤液即为供试品溶液。
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Agilent ZORBAX SB-C18色谱柱( 3.5 μm,2.1 mm×150 mm ),流动相为0.2%甲酸水−10 mmol/L醋酸铵溶液(A)-乙腈(B);梯度洗脱:0~0.6 min, 80%~40% A; 0.6~1 min, 40%~30% A; 1~4.3 min, 30%~5% A;流速:0.3 ml/min;柱温:40 ℃;进样量:10 μl,每个样品的分析周期为4.3 min。
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采用电喷雾离子源(ESI)和多反应监测模式(MRM)。正负离子同时扫描;氮气作为雾化气和干燥气;高纯氮气为碰撞气,毛细管电压为4 000 V;碰撞气压为40 psi;鞘流气温为350 ℃,干燥气温为325 ℃,干燥气流速为12 L/min;将一定浓度的标准溶液和内标溶液进样,在ESI电离方式下进行产物离子全扫描分析(见图1),定量分析质荷比详见表1。
表 1 寒湿郁肺汤中11个主成分及内标的质谱检测参数
测定成分 母离子
(m/z)子离子
(m/z)裂解电压
(V)碰撞能量
(V)ESI
模式香草酸 167.1 152.3 70 10 − 厚朴酚 265.1 247 148 29 − 和厚朴酚 265.2 223.4 135 29 − 汉黄芩素 283.1 268.1 105 13 − 刺槐素 284.9 241.9 140 34 − 6-姜酚 293.2 293.2 130 0 − 桔皮素 373.1 343.2 135 28 + 羌活醇 377.3 377.3 130 0 + 川陈皮素 403.3 373.3 130 26 + 紫花前胡苷 409.2 247.2 95 11 + 利血平(IS) 609.2 195 240 35 − 橙皮苷 609.2 300.9 135 15 − -
分别精密吸取空白溶剂、对照品溶液和供试品溶液各10 μl,按“2.1.2”项下方法制样,再按照“2.2”项下色谱与质谱条件进样测定,记录图谱。结果显示,专属性符合相关要求(图2)。
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精密量取对照品溶液适量,浓度稀释为如下的混合对照品溶液:香草酸、厚朴酚、和厚朴酚、汉黄芩素、刺槐素、桔皮素、羌活醇、紫花前胡苷的线性浓度为20、50、100、200、500、1 000、1 500、2 000 ng/ml;6-姜酚、川陈皮素、橙皮苷的线性浓度为200、500、1 000、2 000、5 000、10 000、15 000、20 000 ng/ml。采用内标定量法按“2.2”项下色谱与质谱条件进行测定,并记录色谱峰面积。以峰面积为纵坐标(Y),对照品质量浓度为横坐标(C),绘制标准曲线,并进行线性回归,结果见表2。
表 2 寒湿郁肺汤中11种成分的线性考察
测定成分 回归方程 r 线性范围(μg/ml) 香草酸 Y=9.023C-1.345 0.99 0.02~2.00 厚朴酚 Y=0.023C+0.002 0.99 0.02~2.00 和厚朴酚 Y=0.028C-0.060 0.98 0.02~2.00 汉黄芩素 Y=0.701C+1.802 0.98 0.02~2.00 刺槐素 Y=0.488C+0.205 0.99 0.02~2.00 6-姜酚 Y=0.003C+1.510 0.99 0.20~20.00 桔皮素 Y=4.291C+70.573 0.99 0.02~2.00 羌活醇 Y=0.173C+3.849 0.98 0.02~2.00 川陈皮素 Y=0.576C+277.012 0.99 0.20~20.00 紫花前胡苷 Y=0.362C-0.081 0.99 0.02~2.00 橙皮苷 Y=0.011C+0.061 0.99 0.20~20.00 -
将母液稀释10倍,按“2.2”项下色谱与质谱条件进行测定,连续进样6次,记录峰面积,计算RSD。结果显示,香草酸、厚朴酚、和厚朴酚、汉黄芩素、刺槐素、6-姜酚、桔皮素、羌活醇、川陈皮素、紫花前胡苷、橙皮苷11种成分的峰面积RSD分别为1.83%、5.57%、4.39%、3.14%、4.25%、4.01%、1.26%、1.40%、1.75%、3.29%、2.55%,表明该方法精密度良好。
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取同一份寒湿郁肺汤供试品溶液,按“2.1.2”项下方法平行制备6份,按“2.2”项下色谱与质谱条件进行测定,记录峰面积,计算RSD。结果显示,香草酸、厚朴酚、和厚朴酚、汉黄芩素、刺槐素、6-姜酚、桔皮素、羌活醇、川陈皮素、紫花前胡苷、橙皮苷11种化学成分的峰面积RSD分别为4.78%、8.40%、5.55%、3.27%、1.51%、3.30%、1.30%、3.37%、1.21%、1.98%、2.46%,表明该方法重复性良好。
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取同一份供试品溶液,按“2.1.2”项下方法制备,室温放置,按“2.2”项下色谱与质谱条件,分别于0、2、4、6、12、16、24 h进样测定,记录峰面积,计算RSD。结果显示,香草酸、厚朴酚、和厚朴酚、汉黄芩素、刺槐素、6-姜酚、桔皮素、羌活醇、川陈皮素、紫花前胡苷、橙皮苷11种化学成分在4 h内的峰面积RSD分别为5.81%、4.68%、3.17%、13.09%、13.20%、8.99%、6.19%、5.19%、4.18%、5.55%、9.47%,表明供试品溶液在室温放置4 h内稳定性良好。
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精密称取已知含量的寒湿郁肺汤样品,加入各对照品适量,平行制备6份,按“2.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.2”项下色谱与质谱条件进样测定,进行UHPLC-MS/MS分析,计算各待测物的平均回收率及其RSD。11种待测物:香草酸、厚朴酚、和厚朴酚、汉黄芩素、刺槐素、6-姜酚、桔皮素、羌活醇、川陈皮素、紫花前胡苷、橙皮苷的平均加样回收率分别为111.73%、102.96%、108.94%、102.90%、99.36%、104.83%、100.55%、100.27%、105.49%、96.92%、93.11%,RSD分别为2.44%、2.37%、4.44%、1.92%、4.60%、2.57%、1.79%、2.36%、4.99%、3.08%、3.59%,表明该方法的准确度良好。
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取9批寒湿郁肺汤药材,按“2.1.2”项下方法制备供试品溶液,按“2.2”项下色谱与质谱条件进行测定,计算寒湿郁肺汤9批样本中11种成分:香草酸、厚朴酚、和厚朴酚、汉黄芩素、刺槐素、6-姜酚、桔皮素、羌活醇、川陈皮素、紫花前胡苷、橙皮苷的含量,测定结果为香草酸0.07~0.09 μg/ml、厚朴酚0.06~0.07 μg/ml、和厚朴酚0.26~0.57 μg/ml、汉黄芩素0.07~0.09 μg/ml、刺槐素0.27~0.29 μg/ml、6-姜酚0.55~0.58 μg/ml、桔皮素0.31~0.33 μg/ml、羌活醇0.54~0.58 μg/ml、川陈皮素3.78~3.81 μg/ml、紫花前胡苷0.31~0.33 μg/ml、橙皮苷1.58~1.61 μg/ml。
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在预实验中分别考察了Agilent ZORBAX SB C18(3.5 μm,2.1 mm ×100 mm)、Agilent ZORBAX SB-C18(3.5 μm,2.1 mm×150 mm)、Waters Xbridge®HILIC(3.5 μm,2.1 mm×100 mm)、Waters Atlantis®T3(3 μm,2.1 mm×100 mm)、Agilent Eclipse XDB-C18(3.5 μm,2.1 mm×150 mm)等色谱柱对11个待测成分含量测定的影响,结果显示,当色谱柱为Agilent ZORBAX SB-C18(3.5 μm,2.1mm×150 mm)时,11个待测成分及内标的峰形最佳。
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实验中分别考察了水-乙腈、0.1%甲酸水-乙腈、0.15%甲酸水-乙腈、0.2%甲酸水-乙腈、5 mmol/L醋酸铵溶液-乙腈、10 mmol/L醋酸铵水-乙腈、0.2%甲酸-10 mmol/L醋酸铵水溶液-甲醇、0.2%甲酸-10 mmol/L醋酸铵水溶液-乙腈等流动相对11个成分含量测定的影响,结果显示,此11个待测成分在0.2%甲酸-10 mmol/L醋酸铵水溶液-乙腈中,采用梯度洗脱,响应与峰形均佳。
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在预实验中分别考察了培美曲塞、利血平、卡马西平三个标准品作为内标时的响应和出峰时间,最终选用了出峰时间居中、响应好、稳定性高的利血平作为内标。本实验中所选取的化学成分以药典为基础,结合文献调研,舍弃挥发油类成分及违禁成分,最终选取了11个能代表药材的化学成分进行研究。
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本研究基于UHPLC-MS/MS同时测定寒湿郁肺汤中11个成分含量的方法,经色谱柱、流动相的优化和全面的方法学考察,成功应用于样品中寒湿郁肺汤11种成分的测定。该法简便可靠,可为寒湿郁肺汤中的成分检测提供一定的方法参考,也为寒湿郁肺汤的质量控制及质量标准研究奠定了基础。
Determination of 11 main components in Hanshi Yufei decoction, a COVID-19 empirical prescription by UHPLC-MS/MS
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摘要:
目的 建立测定寒湿郁肺汤中11个主成分含量的方法。 方法 采用超高效液相色谱串联质谱法(UHPLC-MS/MS),色谱柱为Agilent ZORBAX SB-C18(3.5 μm,2.1 mm×150 mm ),流动相为0.2%甲酸-10 mmol/L醋酸铵水溶液(A)-乙腈(B),梯度洗脱(0~0.6 min, 80%~40%A; 0.6~1 min, 40%~30%A; 1~4.3 min, 30%~5%A),流速0.3 ml/min,柱温40 ℃。以利血平为检测内标,采用多反应监测模式同时测定香草酸、厚朴酚、和厚朴酚、汉黄芩素、刺槐素、6-姜酚、桔皮素、羌活醇、川陈皮素、紫花前胡苷、橙皮苷11个化学主成分的含量。 结果 寒湿郁肺汤中11个主成分在各自浓度范围内线性关系良好(r>0.98),平均回收率在93.11%~111.73%。 结论 该实验所建立的方法操作简便、重复性好,为寒湿郁肺汤的质量控制提供了实验室依据。 -
关键词:
- 超高效液相色谱串联质谱法 /
- 含量测定 /
- 新型冠状病毒肺炎 /
- 寒湿郁肺汤
Abstract:Objective To establish a method to determine 11 main components in Hanshi yufei decoction. Methods The method adopted UHPLC-MS/MS with an Agilent ZORBAX SB-C18 (3.5 μm, 2.1 mm×150 mm) column. The mobile phase was consisted of 0.2% formic acid plus 10 mmol/L ammonium acetate aqueous solution(A) - acetonitrile(B) and gradient elution (0–0.6 min, 80%–40%A; 0.6–1 min, 40%–30%A; 1–4.3 min, 30%–5%A) at 0.3 ml/min. The column temperature was 40 ℃ and 11 main components including vanillic acid, magnolol, honokiol, wogonin, sophorin, 6-gingerol, citrinin, qianghuo alcohol, nobiletin, nodakenin, and hesperidin were quantified in a multiple reaction monitoring mode. The reserpine was the standard. Results The 11 main components in Hanshi Yufei decoction had a good linear relationship within their concentration range (r>0.98), and the average recovery was 93.11%~111.73%. Conclusion The UHPLC-MS/MS method established in this experiment is easy to operate and has good reproducibility, which provides a laboratory basis for the quality control of Hanshi Yufei decoction. -
Key words:
- UHPLC-MS/MS /
- content determination /
- COVID-19 /
- Hanshi Yufei decoction
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表 1 寒湿郁肺汤中11个主成分及内标的质谱检测参数
测定成分 母离子
(m/z)子离子
(m/z)裂解电压
(V)碰撞能量
(V)ESI
模式香草酸 167.1 152.3 70 10 − 厚朴酚 265.1 247 148 29 − 和厚朴酚 265.2 223.4 135 29 − 汉黄芩素 283.1 268.1 105 13 − 刺槐素 284.9 241.9 140 34 − 6-姜酚 293.2 293.2 130 0 − 桔皮素 373.1 343.2 135 28 + 羌活醇 377.3 377.3 130 0 + 川陈皮素 403.3 373.3 130 26 + 紫花前胡苷 409.2 247.2 95 11 + 利血平(IS) 609.2 195 240 35 − 橙皮苷 609.2 300.9 135 15 − 表 2 寒湿郁肺汤中11种成分的线性考察
测定成分 回归方程 r 线性范围(μg/ml) 香草酸 Y=9.023C-1.345 0.99 0.02~2.00 厚朴酚 Y=0.023C+0.002 0.99 0.02~2.00 和厚朴酚 Y=0.028C-0.060 0.98 0.02~2.00 汉黄芩素 Y=0.701C+1.802 0.98 0.02~2.00 刺槐素 Y=0.488C+0.205 0.99 0.02~2.00 6-姜酚 Y=0.003C+1.510 0.99 0.20~20.00 桔皮素 Y=4.291C+70.573 0.99 0.02~2.00 羌活醇 Y=0.173C+3.849 0.98 0.02~2.00 川陈皮素 Y=0.576C+277.012 0.99 0.20~20.00 紫花前胡苷 Y=0.362C-0.081 0.99 0.02~2.00 橙皮苷 Y=0.011C+0.061 0.99 0.20~20.00 -
[1] LUO H, TANG Q L, SHANG Y X, et al. Can Chinese medicine be used for prevention of Corona virus disease 2019 (COVID-19)? A review of historical classics, research evidence and current prevention programs[J]. Chin J Integr Med,2020,26(4):243-250. doi: 10.1007/s11655-020-3192-6 [2] LI Y X, LIU X B, GUO L X, et al. Traditional Chinese herbal medicine for treating novel coronavirus (COVID-19) pneumonia: protocol for a systematic review and meta-analysis[J]. Syst Rev,2020,9(1):75. doi: 10.1186/s13643-020-01343-4 [3] ZHU F C, LI Y H, GUAN X H, et al. Safety, tolerability, and immunogenicity of a recombinant adenovirus type-5 vectored COVID-19 vaccine: a dose-escalation, open-label, non-randomised, first-in-human trial[J]. Lancet,2020,395(10240):1845-1854. doi: 10.1016/S0140-6736(20)31208-3 [4] 国家卫生健康委员会. 新型冠状病毒肺炎诊疗方案(试行第七版)[EB/OL]. [2020-12-01]. http://www.gov.cn/zhengce/zhengceku/2020-03/04/content_5486705.htm [5] REN J L, ZHANG A H, WANG X J. Traditional Chinese medicine for COVID-19 treatment[J]. Pharmacol Res,2020,155:104743. doi: 10.1016/j.phrs.2020.104743 [6] YANG Y, ISLAM M S, WANG J, et al. Traditional Chinese medicine in the treatment of patients infected with 2019-new coronavirus (SARS-CoV-2): a review and perspective[J]. Int J Biol Sci,2020,16(10):1708-1717. doi: 10.7150/ijbs.45538 [7] 中华医学会检验医学分会, 卫生计生委临床检验中心. 液相色谱-质谱临床应用建议[J]. 中华检验医学杂志, 2017, 40(10):770-779. -