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顺式阿曲库铵（cisatracurium, CA）是一种新型中时效非去极化肌松药，其结构式如图1，因其代谢方式（Hofmann elimination，霍夫曼降解）独特，同时释放较低水平的组胺，在临床麻醉过程中被广泛应用。因与其他非去极化肌松药一样，存在术后肌松残留作用[1]，且已成为麻醉后呼吸系统不良事件的主要原因。因此，为保证患者围术期安全，对顺式阿曲库铵进行血药浓度监测十分必要。
图 1 顺式阿曲库铵的结构式
CA的稳定性主要受温度和pH影响，温度和pH升高可加快其消除，因此离体后的生物样本稳定性是血药浓度监测方法建立的一个难点。国内外文献报道测定人血浆中CA浓度的方法主要为高效液相色谱荧光检测法（HPLC-FD）及高效液相色谱串联质谱法（LC-MS）[2-6]，但样本前处理方法较为复杂。本研究在既往文献报道的基础上，建立了一种更加简便、准确、快速、稳定的LC-MS方法，适用于人血浆中CA的血药浓度测定。
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高效液相色谱仪（Agilent 6410，美国Agilent公司）；Triple Quad三重四极杆质谱仪，配电喷雾（ESI）离子源（美国Agilent公司）；纯水机（Millipore）；分析天平（BP211D，德国Sartorius公司）。对照品顺式阿曲库铵（cisatracurium，CA，批号：C496700，纯度90%，Toronto Reasearch Chemicals Inc公司）；对照品盐酸普罗帕酮（propafenone hydrochloride，PPF，批号：101190-201101，纯度99.9%，中国药品食品检定研究院）；乙腈、甲酸均为质谱纯（美国TEDIA公司）；水为自制超纯水。
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Agilent SB-C18色谱柱（2.1 mm×50 mm, 3 µm），柱温35 ℃；流动相A为0.1%甲酸水溶液，B为0.1%甲酸乙腈溶液。线性梯度洗脱：0 ~1 min, 20% B；1~3 min，50% B；3 ~5 min，20% B; 5 ~10 min，20% B。流速0.3 ml/min；进样量2 µl。
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采用正离子工作模式；离子源为ESI源；多反应监测（multiple reaction monitoring, MRM）。毛细管电压4 000 V；干燥器温度350 ℃；干燥气流速12 L/min；雾化器压力35 psi。MRM监测离子对，离子驻留时间、碰撞诱导解离电压及碰撞能量等参数见表1。典型质谱图见图2。
表 1 质谱条件
成分 母离子 子离子 驻留时间（t/ms） 碰撞电压(U/V) 电子倍增电压( U/V) 碰撞能量(U/V) CA 464.4 358.4 20 110 200 20 PPF 342.2 166.2 200 130 200 17 
图 2 HPLC-MS色谱图
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CA标准储备液：精密称取CA 10 mg置10 ml容量瓶，加入2%甲酸甲醇溶液至刻度，溶解混匀，配制成相当于CA质量浓度为1 mg/ml的储备液，于冰箱（4 ℃）备用。
CA标准工作液：精密吸取CA储备液适量，用50%甲醇水溶液配制成系列浓度的工作溶液，其中，CA质量浓度分别为5 000、2 500、1 000、500、250、100、20 ng/ml。
PPF标准储备液：精密称取PPF 0.4 mg置2 ml容量瓶，加甲醇至刻度，溶解混匀，配制成相当于PPF质量浓度为0.2 mg/ml的储备液，于冰箱（4 ℃）备用。
PPF标准工作液：精密吸取PPF储备液适量，配制成200 ng/ml的含内标乙腈溶液。
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精密吸取血浆30 μl，加入2%甲酸水溶液30 μl，振摇10 s，再加50 μl含内标乙腈溶液后旋涡振荡10 s，12 000 r/ min离心10 min，转移上清液置进样瓶，进样。
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取空白人血浆，精密加入不同浓度的对照品溶液，配制成CA浓度为500、250、100、50、25、10、2 ng/ml的血浆标准品。以浓度为X轴，样品峰与内标峰的比值为Y轴，进行线性回归，经“1/X”权重得回归方程分别为：Y = 7.43×10–3 + 1.99 × 10–2X (r = 0.996 5)。结果表明，CA在2~500 ng/ml内，线性关系良好。本方法CA的定量下限为2 ng/ml。
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配制CA浓度分别为8、80、400 ng/ml的血浆样品，日内误差以3个浓度各5个样品的测定结果表示；日间误差以3个浓度样品分别3个批次结果表示。人空白血浆分别加入不同浓度CA工作溶液，按照“2.3”项下方法提取后，相同色谱条件进行浓度测定。同时测定用流动相稀释为相应浓度的无基质溶液的峰面积，以计算绝对回收率。结果如表2所示。
表 2 CA人血浆样品的系统精密度与准确度（回收率）
CA理论浓度（ng/ml） 日内 日间 测得浓度（ng/ml） 精密度RSD（%） 准确度REC（%） 测得浓度（ng/ml） 精密度RSD（%） 准确度REC（%） 8 8.53 2.39 106.67 8.52 2.00 106.46 80 89.54 1.77 111.93 88.16 3.48 110.19 400 390.53 15.9 97.63 398.59 5.19 99.65 -
空白血浆分别配制成8、80、400 ng/ml的样品，每批次各3个，分别考察其①室温下放置4 h；②处理后室温放置24 h；③-80 ℃放置14 d的稳定性。结果如表3所示。
表 3 CA人血浆样品不同条件下的稳定性
时间 样品浓度（ng/ml） REC（%） RSD（%） 室温4 h 低 103.50 9.28 中 98.27 5.26 高 101.33 3.73 处理后室温24 h 低 77.22 5.37 中 112.95 10.83 高 110.46 6.80 –80 ℃ 14 d 低 75.40 7.95 中 113.67 23.61 高 98.22 1.69 -
取6个不同来源的人空白血浆30 μl，除不加内标外，其余按“2.3”项下操作，取上清液，分别制备成CA浓度为31.25和1 000 ng/ml；PPF浓度为200 ng/ml的溶液，进样测定，记录峰面积。另用流动相将CA稀释成31.25和1 000 ng/ml；PPF浓度为200 ng/ml浓度的溶液，进样测定，记录峰面积。
基质效应=（空白基质中添加工作溶液峰面积/重组溶液中添加工作溶液峰面积）×100%
CA的基质效应为52%（RSD 2.09%~15.33%）。PPF的基质效应为96.71%（RSD4.6%）。
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采用肌松仪监测患者注射苯磺顺式阿曲库铵后神经肌肉阻滞程度。给予4个成串刺激（train of four stimulation，TOF），给药后，T4最先发生衰减，T1最后衰减。当T1消失即仪器显示为0时，肌肉阻滞程度最大，随后逐渐恢复。分别在T0（T1消失至0）、TOFr 50（恢复至50%）、TOFr 90（恢复至90%）时采集输液对侧动脉血3 ml，并及时保存于4 ℃冰箱中。采用建立的方法测定样本血药浓度，结果见表4。同时记录T0（给药结束到T1消失至0）、TOFr50（给药结束到恢复至50%）、TOFr90（给药结束到恢复至90%）发生所需时间，结果见表5、表6。
表 4 6例受试者血浆中CA血药浓度测定结果
TOF (%) 浓度（ng/ml） 受试者1 受试者2 受试者3 受试者4 受试者5 受试者6 0 445.02 525.30 253.83 165.29 150.57 309.22 50 76.58 125.65 68.71 68.99 53.18 58.46 90 44.10 71.80 60.72 71.74 41.12 45.07 表 5 6例受试者临床资料
基本信息 受试者1 受试者2 受试者3 受试者4 受试者5 受试者6 性别 女 女 女 男 女 男 年龄（岁） 50 49 53 70 36 40 体重（m/kg） 70 75 60 50 53 80 身高（l/cm） 165 165 164 161 165 173 表 6 6例受试者达到各TOF值的时间
TOF（%） 时间（t/min） 0 10 15 15 20 20 20 50 70 70 65 65 65 75 90 105 95 95 100 85 110 -
CA的代谢途径主要为Hoffman消除[7]，Hoffman消除受温度和pH值的影响。有研究显示[8]，将苯磺顺阿曲库铵注射液稀释于20%的甲醇中，室温下，10~15 min即可检测到大量降解产物N-甲基四氢罂粟碱和单季丙烯酸酯。血浆的pH值在7.4左右。我们发现，在CA血浆样本前处理过程中，如果不加入酸调节pH值，即使在-80 ℃的储存条件下，CA仍然会很快降解（结果未在文中体现）。为此，我们考察了不同比例的甲酸，最终确定了在样本前处理过程中加入2%的甲酸能够保证血浆中CA的稳定性。在既往报道中，多是加入一定浓度的硫酸来调控pH值[2-6]。硫酸为有机酸，对测定仪器尤其是质谱仪的离子源损害很大。同时，加入硫酸并不能保证室温条件下样本的长时间稳定（<4 h）[9]。本研究结果显示，加入2%的甲酸，室温下样本稳定性可保持在24 h以上。此外，我们的样本前处理过程并不需要经过离心-上清液真空浓缩或氮吹浓缩-复溶-离心取上清液等[2-6, 9]复杂过程，更为省时、省力。经验证，本研究建立的方法测定CA血浆样本的精密度、准确度和稳定性均符合方法学要求。该方法更加简便、准确、快速、稳定，可应用于临床CA治疗药物浓度的监测。
Cisatracurium assay in human plasma by LC-MS
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摘要:
目的 建立高效液相色谱串联质谱方法（ LC-MS ）测定人血浆中顺式阿曲库铵的浓度，并应用于 临床治疗药物监测。 方法 采用盐酸普罗帕酮同位素内标，样品经2%甲酸水和含内标的乙腈溶液沉淀蛋白处理。HPLC色谱柱为Agilent SB-C18，柱温35 ℃，流速0.3 ml/min，流动相为0.1%甲酸水和0.1%甲酸乙腈溶液，梯度洗脱。质谱检测方式为ESI正离子模式，MRM扫描，监测阿曲库铵m/z 464.6~358.4，盐酸普罗帕酮（内标）m/z 342.2~116.2。 结果 人血浆中顺式阿曲库铵在该条件下分离良好，在2~500 ng/ml浓度范围内线性关系良好（r=0.996 5），定量下限为2 ng/ml。方法日内精密度RSD<16.0%；日间精密度RSD<6.0%。平均回收率为97.63%~111.93%；血浆样品室温放置4 h，-80 ℃放置14 d，处理后室温放置24 h，稳定性良好。 结论 本方法简便、准确、快速、稳定，适用于顺式阿曲库铵的血药浓度测定。 -
关键词:
- 顺式阿曲库铵 /
- 高效液相色谱串联质谱 /
- 人血浆 /
- 治疗药物监测
Abstract:Objective To establish a LC-MS method of cisatracurium assay in human plasma for clinical therapeutic drug monitoring. Method Propafenone Hydrochloride was used as the internal standard. The plasma samples were treated with 2% formic acid aqueous solution and acetonitrile containing the internal standard to precipitate protein. Agilent SB-C18 column was used for gradient elution with the mobile phase of 0.1% formic acid-water and 0.1% formic acid-acetonitrile solution at 35 ℃ and 0.3 ml/min flow rate. The degradation products of cisatracurium m/z 464.6-358.4 and propafenone hydrochloride m/z 342.2-116.2 were identified by ESI positive-ion detection. Results There was a linear rage of cisatracurium in 2-500 ng/ml (r=0.996 5) with a detection limit of 2 ng/ml. The intra-day coefficients of variation (CVs) were less than 16.00%, and the inter-day CVs were less than 6.00%. The mean recoveries were in the range of 97.63%-111.93%. The plasma samples were stable for 4 hours at room temperature, 14 days at -80 ℃ and 24 hours after pretreated. Conclusion This method was simple, accurate, fast and repeatable for the cisatracurium assay in human plasma. -
Key words:
- cisatracurium /
- LC-MS /
- human plasma /
- therapeutic drug monitoring
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表 1 质谱条件
成分 母离子 子离子 驻留时间（t/ms） 碰撞电压(U/V) 电子倍增电压( U/V) 碰撞能量(U/V) CA 464.4 358.4 20 110 200 20 PPF 342.2 166.2 200 130 200 17 
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表 2 CA人血浆样品的系统精密度与准确度（回收率）
CA理论浓度（ng/ml） 日内 日间 测得浓度（ng/ml） 精密度RSD（%） 准确度REC（%） 测得浓度（ng/ml） 精密度RSD（%） 准确度REC（%） 8 8.53 2.39 106.67 8.52 2.00 106.46 80 89.54 1.77 111.93 88.16 3.48 110.19 400 390.53 15.9 97.63 398.59 5.19 99.65
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表 3 CA人血浆样品不同条件下的稳定性
时间 样品浓度（ng/ml） REC（%） RSD（%） 室温4 h 低 103.50 9.28 中 98.27 5.26 高 101.33 3.73 处理后室温24 h 低 77.22 5.37 中 112.95 10.83 高 110.46 6.80 –80 ℃ 14 d 低 75.40 7.95 中 113.67 23.61 高 98.22 1.69
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表 4 6例受试者血浆中CA血药浓度测定结果
TOF (%) 浓度（ng/ml） 受试者1 受试者2 受试者3 受试者4 受试者5 受试者6 0 445.02 525.30 253.83 165.29 150.57 309.22 50 76.58 125.65 68.71 68.99 53.18 58.46 90 44.10 71.80 60.72 71.74 41.12 45.07
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表 5 6例受试者临床资料
基本信息 受试者1 受试者2 受试者3 受试者4 受试者5 受试者6 性别 女 女 女 男 女 男 年龄（岁） 50 49 53 70 36 40 体重（m/kg） 70 75 60 50 53 80 身高（l/cm） 165 165 164 161 165 173
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[1] SZAKMANY T, WOODHOUSE T. Use of cisatracurium in critical care: a review of the literature[J]. Minerva Anestesiol,2015,81(4):450-460. [2] DEAR G J, HARRELSON J C, JONES A E, et al. Identification of urinary and biliary conjugated metabolites of the neuromuscular blocker 51W89 by liquid chromatography/mass spectrometry[J]. Rapid Commun Mass Spectrom,1995,9(14):1457-1464. doi: 10.1002/rcm.1290091425 [3] ZHANG H, WANG P, BARTLETT M G, et al. HPLC determination of cisatracurium besylate and propofol mixtures with LC-MS identification of degradation products[J]. J Pharm Biomed Anal,1998,16(7):1241-1249. doi: 10.1016/S0731-7085(97)00262-8 [4] SAYER H, QUINTELA O, MARQUET P, et al. Identification and quantitation of six non-depolarizing neuromuscular blocking agents by LC-MS in biological fluids[J]. J Anal Toxicol,2004,28(2):105-110. doi: 10.1093/jat/28.2.105 [5] GAO J Y, YANG T, YE M, et al. High-performance liquid chromatography assay with programmed flow elution for cisatracurium in human plasma: application to pharmacokinetics in infants and children[J]. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci,2014,955-956:58-63. doi: 10.1016/j.jchromb.2014.02.023 [6] GUO J R, YUAN X H, ZHOU X F, et al. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of cisatracurium in patients undergoing surgery with two hemodilution methods[J]. J Clin Anesth,2017,38:75-80. doi: 10.1016/j.jclinane.2017.01.013 [7] KISOR D F, SCHMITH V D, WARGIN W A, et al. Importance of the organ-independent elimination of cisatracurium[J]. Anesth Analg,1996,83(5):1065-1071. doi: 10.1213/00000539-199611000-00029 [8] BŁAZEWICZ A, FIJAŁEK Z, WAROWNA-GRZEŚKIEWICZ M, et al. Determination of atracurium, cisatracurium and mivacurium with their impurities in pharmaceutical preparations by liquid chromatography with charged aerosol detection[J]. J Chromatogr A,2010,1217(8):1266-1272. doi: 10.1016/j.chroma.2009.12.025 [9] 吴祝峰. 顺苯磺阿曲库铵在先天性心脏病患者中的药动学与药效学研究[D]. 广州: 暨南大学, 2016. -
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图(2) / 表(6)
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