Anti-fatigue activity of selenium nanoparticles functionalized by polysaccharides from Pleurotus tuber-regium sclerotium

SPF级C57/BL6小鼠48只，雄性，6~8周龄，体质量20 g~25 g，由江苏赛业模式生物研究中心（太仓）有限公司提供，生产许可证号：SCXK（苏）2018-0003。于福建中医药大学动物实验中心SPF级动物房内饲养。

PTR-SeNPs（香港理工大学未来食品研究院食品科学及营养学系黄家兴教授制备并提供，初始摩尔浓度为1.30 mmol/L）；生理盐水（福州海王福药制药有限公司)；血清尿素氮(BUN)、乳酸(LD)、谷丙转氨酶(ALT)、谷草转氨酶(AST)、乳酸脱氢酶（LDH）、超氧化物歧化酶（SOD）、丙二醛(MDA)、过氧化氢(CAT)和糖原(Glycogen)测定试剂盒(南京建成生物工程研究所)；BCA蛋白浓度测定试剂盒（碧云天生物技术有限公司）；动物用异氟烷(深圳市瑞沃德生命科技有限公司)。

5417R低温高速离心机（德国Eppendorf公司）；LXJ-IIB低速离心机（上海安亭科学仪器厂）；Th900超低温冰箱（美国Thermo公司）；DK-S24电热恒温水浴锅（上海精宏实验设备有限公司）；AR2310电子天平（奥豪斯仪器有限公司）；M-244超纯水机（德国Milipore公司）；BCD-216SDN 4℃冰箱（中国Haier集团）；Lab dancer S25涡旋仪（IKA公司）；M200 Pro多功能酶标仪（瑞士Tecan公司）；IMS-300全自动雪花制冰机（常熟市雪科电器有限公司）；BioSpec 70/20 USR小动物核磁共振成像仪（瑞士布鲁克公司）。

C57/BL6小鼠48只，雄性，6～8周龄，体质量20～25 g，在SPF级实验动物房饲养，室内温度为20℃～26℃，相对湿度40%～70%，噪声<60 dB，光照明暗交替12 h/d，所有小鼠适应性喂养1周，待处理。将C57/BL6小鼠分为4组，每组12只，分别为对照组、游泳训练模型组（EC组）、PTR-SeNPs低剂量组[2.5 μmol/（kg·bw），LPTR-SeNPs组]、PTR-SeNPs高剂量组[10 μmol/(kg·bw)，HPTR-SeNPs组]。按所示剂量灌胃21 d，每天给药1次。第1～4天，给药30 min后，适应性游泳训练20 min，连续4 d，第5～7天每天比前1 d增加20 min，连续3 d，第8～20天每天游泳80 min，持续13 d。每日监测食物与水的摄取量，并定期记录小鼠体质量变化情况（第1、5、10、15和20天）。第21天给药30 min后，每组各取3只，游泳80 min后，MRI扫描小鼠后肢肌肉长度和宽度，其余小鼠进行负重力竭游泳训练后，眼球取血并摘取肝脏，进行疲劳相关生化指标检测（图1）。

第21天给药30 min后，每组各取3只，异氟烷气体麻醉小鼠，MRI扫描小鼠后肢肌肉，利用ImageJ软件分析各组的肌肉长度和宽度，计算各组与对照组之间的比值，即得各组的肌肉相对长度和宽度。

第21天给药30 min后，在尾部绑上重量为小鼠体质量5%的铅丝，将其放入水温为（30±2）℃、50 cm×40 cm×40 cm的水箱中进行负重力竭游泳测试。适当用玻璃棒搅拌水，或拨弄小鼠，使小鼠一直处于运动状态。小鼠的头部沉下水面8 s不能浮出即判断为力竭，记录每只小鼠从开始游泳至力竭的时间^[19]。每只小鼠测试过后更换新的超纯水，避免小鼠留在水中的警戒物质对其他小鼠产生干扰。负重力竭游泳结束后立即进行眼球取血，脱颈处死，摘取肝脏，保存于−80℃，待测。

小鼠眼球取血，3 500 r/min，4℃离心15 min，取血清，参照试剂盒说明书检测血清中BLA、BUN、ALT、AST和LDH含量。

取适量肝组织，用生理盐水漂洗，吸净水分，参照试剂盒说明书检测肝脏中SOD、CAT活性和MDA、HG水平。

采用SPSS 23.0软件对实验数据统计分析，以（$ \bar{x}\pm {s} $）表示，采用ANOVA单因素方差分析数据，以P<0.05差异有统计学意义。

MRI扫描小鼠后肢肌肉（图2），ImageJ软件分析并计算各组小鼠后肢肌肉的相对长度和宽度，结果如图3所示。与对照组比较，HPTR-SeNPs能显著增加后肢肌肉相对长度（P<0.05）。结果表明，PTR-SeNPs可通过增加后肢肌肉长度，改变肌肉结构，可能与提高机体的耐力相关。

疲劳是机体复杂的生理变化过程，运动耐力可作为客观直接的判断标准^[20]。由图4A-C可知，与对照组比较，给药21 d后，L/HPTR-SeNPs对运动训练小鼠的体质量、摄食和摄水量均无显著影响。小鼠连续灌胃给予PTR-SeNPs 21 d后，通过负重力竭游泳实验考察PTR-SeNPs对小鼠运动性疲劳的影响，结果如图4D所示，与对照组比较，HPTR-SeNPs显著提高小鼠的负重力竭游泳时间（P<0.05）；与EC组或LPTR-SeNPs组比较，HPTR-SeNPs能显著提高小鼠的负重力竭游泳时间（P<0.01），说明PTR-SeNPs可以显著提高小鼠运动耐力，明显缓解小鼠疲劳症状。

糖原作为机体主要的供能物质，运动产生疲劳时，大量ATP被消耗，此时机体糖酵解过程增强，糖酵解过程最终代谢产物为BLA，BLA在机体内大量堆积，使机体内环境呈酸性，细胞正常的能量转换和物质代谢受到影响，最终导致机体产生疲劳^[21-23]。当机体能量消耗达到一定程度，体内的蛋白质开始分解，参与能量代谢，使得血清中BUN含量急剧升高^[24]。小鼠血清BLA含量检测结果如图5A所示，与对照组比较，EC组BLA含量显著升高（P<0.05）；与EC组比较，LPTR-SeNPs组与HPTR-SeNPs组BLA含量显著下降（P<0.05或P<0.01）。表明PTR-SeNPs可能通过促进葡萄糖更充分氧化分解，减少BLA的生成，或者加快BLA代谢，从而提供更为充足的ATP，减少运动小鼠BLA的蓄积。血清BLA含量检测结果如图5B 所示，与对照组比较，EC组和LPTR-SeNPs组BUN含量显著升高（P<0.01）；而HPTR-SeNPs组的BUN含量则无显著性差异。与EC组比较，HPTR-SeNPs组BUN含量显著下降（P<0.05）。提示PTR-SeNPs可能通过提高葡萄糖的利用，减少蛋白质分解，降低疲劳小鼠血清BUN的生成。

机体在进行剧烈运动时，会生成大量的自由基，使机体产生氧化应激，导致肝脏、心肌和肌肉等组织器官出现受损，血清中ALT、AST和LDH水平亦可作为评价小鼠在游泳应激过程中的敏感指标^[25]。由图6可知，与对照组比较，EC组血清中的ALT、AST和LDH含量显著升高。LPTR-SeNPs组的ALT和LDH含量以及L/HPTR-SeNPs组AST含量均显著升高。与EC组比较，HPTR-SeNPs组ALT水平显著降低（P<0.05），见图6A；L/HPTR-SeNPs组的AST水平显著降低（P<0.05），见图6B；HPTR-SeNPs组的LDH活性水平显著降低（P<0.01），见图6C。结果提示PTR-SeNPs改善运动性疲劳过程中的肝脏生理功能。

机体内含有的多种抗氧化活性酶，如SOD和CAT，可减少体内活性氧自由基的含量，保护肌细胞。抗氧酶活性的提高能够延缓运动疲劳，MDA水平可作为判断机体内物质氧化程度的指标^[26-27]。由图7可知，与对照组比较，HPTR-SeNPs组的CAT活力和HG含量显著升高（P<0.01）。与EC组比较，LPTR-SeNPs组小鼠肝脏中SOD活力和HG含量显著升高（P<0.05），HPTR-SeNPs组小鼠肝脏中CAT活力和HG含量显著升高（P<0.01）。表明PTR-SeNPs可以提高体内SOD、CAT活力，清除体内自由基，减缓小鼠剧烈运动后MDA堆积对肌细胞所造成的损害，同时提高机体HG含量。提示PTR-SeNPs能够显著提高机体的抗氧化应激能力和HG储备能力，从而有效改善运动性疲劳。表明PTR-SeNPs具有增强肝脏生理功能的作用，能有效拮抗游泳训练疲劳的发生。

目前，疲劳已严重影响到人们的身心健康和生活质量，受到了国内外专家的关注，并逐渐成为学者研究的热门课题。硒是生物体中必需的微量元素，在预防癌症、心血管疾病和提高免疫力中具有重要作用。近年来，SeNPs作为一种新型补硒药物出现，具有更好的生物利用度以及更小的毒性^[2]。然而，SeNPs不稳定、极易聚集的性质，限制了其在临床上的应用。近年来，天然生物大分子作为SeNPs的修饰剂，可提高其稳定性和生物活性，并逐渐成为研究热点^[15]。蘑菇多糖具有丰富的羟基，能有效地吸附在SeNPs上，避免其聚积和沉淀^[28]。研究表明，蘑菇多糖修饰的SeNPs其稳定性大幅增强，且具有抗肿瘤、抗氧化、保肝和抗疲劳活性等多种生物活性^[29]。

本研究结果表明，PTR-SeNPs能显著拮抗小鼠的游泳训练疲劳，其抗疲劳作用可能与改善肝脏生理功能、增加糖原储备、减少代谢物堆积及增强机体抗氧化能力有关。因此，深入探究PTR-SeNPs的抗疲劳活性作用机制，为其在抗疲劳药物及保健品的开发应用提供重要的实验参考依据。